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Post-Bac
1

Prélèvement et opération d’échantillonnage

Diag de Lab

I. Collecte d’échantillons

Aiguilles : 21-22G ➞ petits animaux

18G ➞ grands animaux

II. Artefacts de la collection

Ponction veineuse difficile (lente ou traumatisante) : peut précipiter l’agglutination des plaquettes et induire des petits microcaillots.

• Faible volume d’échantillon : prélèvement <5mL en tube EDTA => rétraction des GR car EDTA hypertonique => fausse ↓ du V cellulaire moyen et crénation? des GR (formation d’échinocytes)

Mélange inapproprié avec l’anticoagulant :

* le sang doit être mélangé à l’anticoag pdt ou immédiatement après le prélèvement de l’échantillon

* mélange inadéquat => coag de l’échantillon => microcaillots

III. Les prélèvements

1) Prélèvement d’échantillons pour tests hématologiques

Tube EDTA (bouchon violet)

Mélanger doucement le sang avec l’anticoagulant pendant et après le prélèvement

⚠️ oisx (grues), resptiles (tortues) ➞ sur citrate ou héparine car le sg s’hémolyse au contact de l’EDTA


Frottis : faire au moment du prélèvement (sinon crénation? des GR = formation d’échinocytes)

2) Prélèvement d’échantillons pour analyses chimiques

➞ sur échantillons de sérum ou de plasma

➞ centrifuger dès que possible après le prélèvement pour éviter les artefacts


NB : certains tests chimiques peuvent être effectués sur l’urine (ex. Rapport urée/creat, mesure GGT urinaire pour les lésions rénales) et sur fluides oculaires (test post-mortem)

3) Prélèvement d’échantillons pour analyse d’urine

  • Méthode de prélèvement

➞ échantillons prélevés le matin ou à jeun :

*USG plus élevée (↓ ou abs de prise d’eau)

*pH plus faible

*plus d’éléments formés (si la période de formation est plus longue)

➞ échantillons de l’après-midi :

*USG plus faible

*pH plus alcalin

*moins d’éléments formés (si la période de formation est plus courte)


  • Méthodes de collecte

➞ Sur le sol : la - optimal

➞ Prise libre : idéal pour minimiser la conta bactérienne mais possibilité de voir des bactéries contaminants, des cellules squameuses provenant des voitures urinaires distales, des voies génitales ou de la peau

➞ Cathétérisé :

*en cas de trauma ou irritation urètre => hémorragie

*surtout utilisée chez les chiens mâles

➞ Cystocentèse : la méthode la plus propre (stérile)

*traumatisante => peut entraîner hématurie microscopique (urine toujours de couleur normale, n’est pas rouge)

*Plus de 100GR/HPF peuvent être observés, ce qui montre une véritable hématurie

*Une ↑ des protéines n’est généralement pas observée en cas d’hématurie microscopique (mais ne peut pas non plus accompagner une véritable hématurie)

IV. Artéfacts de stockage

De nombreux changements lors du stockage du sérum ou du plasma sur des cellules (non séparées)

Ces changements sont minimisés (mais pas éliminés) par le stockage au froid et se produisent toujours avec les tubes séparateurs de sérum (le gel n’est pas une barrière imperméable)

> Hypoglycémie : conso de glucose par les cellules

> Hyperkaliémie : chez les espèces dont les GR contiennent bcp de potassium (chevaux, Akitas, moutons, certains bovins, camélidés)

> Hémolyse : ce phénomène affecte de différentes manières les résultats de nombreux tests


Post-Bac
1

Prélèvement et opération d’échantillonnage

Diag de Lab

I. Collecte d’échantillons

Aiguilles : 21-22G ➞ petits animaux

18G ➞ grands animaux

II. Artefacts de la collection

Ponction veineuse difficile (lente ou traumatisante) : peut précipiter l’agglutination des plaquettes et induire des petits microcaillots.

• Faible volume d’échantillon : prélèvement <5mL en tube EDTA => rétraction des GR car EDTA hypertonique => fausse ↓ du V cellulaire moyen et crénation? des GR (formation d’échinocytes)

Mélange inapproprié avec l’anticoagulant :

* le sang doit être mélangé à l’anticoag pdt ou immédiatement après le prélèvement de l’échantillon

* mélange inadéquat => coag de l’échantillon => microcaillots

III. Les prélèvements

1) Prélèvement d’échantillons pour tests hématologiques

Tube EDTA (bouchon violet)

Mélanger doucement le sang avec l’anticoagulant pendant et après le prélèvement

⚠️ oisx (grues), resptiles (tortues) ➞ sur citrate ou héparine car le sg s’hémolyse au contact de l’EDTA


Frottis : faire au moment du prélèvement (sinon crénation? des GR = formation d’échinocytes)

2) Prélèvement d’échantillons pour analyses chimiques

➞ sur échantillons de sérum ou de plasma

➞ centrifuger dès que possible après le prélèvement pour éviter les artefacts


NB : certains tests chimiques peuvent être effectués sur l’urine (ex. Rapport urée/creat, mesure GGT urinaire pour les lésions rénales) et sur fluides oculaires (test post-mortem)

3) Prélèvement d’échantillons pour analyse d’urine

  • Méthode de prélèvement

➞ échantillons prélevés le matin ou à jeun :

*USG plus élevée (↓ ou abs de prise d’eau)

*pH plus faible

*plus d’éléments formés (si la période de formation est plus longue)

➞ échantillons de l’après-midi :

*USG plus faible

*pH plus alcalin

*moins d’éléments formés (si la période de formation est plus courte)


  • Méthodes de collecte

➞ Sur le sol : la - optimal

➞ Prise libre : idéal pour minimiser la conta bactérienne mais possibilité de voir des bactéries contaminants, des cellules squameuses provenant des voitures urinaires distales, des voies génitales ou de la peau

➞ Cathétérisé :

*en cas de trauma ou irritation urètre => hémorragie

*surtout utilisée chez les chiens mâles

➞ Cystocentèse : la méthode la plus propre (stérile)

*traumatisante => peut entraîner hématurie microscopique (urine toujours de couleur normale, n’est pas rouge)

*Plus de 100GR/HPF peuvent être observés, ce qui montre une véritable hématurie

*Une ↑ des protéines n’est généralement pas observée en cas d’hématurie microscopique (mais ne peut pas non plus accompagner une véritable hématurie)

IV. Artéfacts de stockage

De nombreux changements lors du stockage du sérum ou du plasma sur des cellules (non séparées)

Ces changements sont minimisés (mais pas éliminés) par le stockage au froid et se produisent toujours avec les tubes séparateurs de sérum (le gel n’est pas une barrière imperméable)

> Hypoglycémie : conso de glucose par les cellules

> Hyperkaliémie : chez les espèces dont les GR contiennent bcp de potassium (chevaux, Akitas, moutons, certains bovins, camélidés)

> Hémolyse : ce phénomène affecte de différentes manières les résultats de nombreux tests


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